



| ノーザンブロットから分かるNorth2SouthTM Chemiluminescent Detection Systemのバックグラウンドの低さ |
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しっかりしたシステム
・ キット添付のプロトコール中、ハイブリダイゼーションとブロッキングステップは経験を重ねて最適化されています
32P相当の感度
・ ピアスの新しいHRP用のルミノール基質は32P相当の感度を誇る非放射性検出システムです
ハイブリダイゼーション後の処理時間はわずか60分
・ DIG検出の標準的なシステムはさらに150%以上もの処理時間がかかります
フィルムへの現像時間は30−600秒
・標準的なDIG検出システムだと、0.5〜4時間かかります
6時間の間に何度でも現像ができます
低バックグラウンドでシグナルくっきり
・周りのバックグラウンドが低いので、シグナルが集中 |
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| SN比のばらつきは最小限・ バックグラウンドノイズは長い現像時間をおいても低いレベルのまま保たれ、さらに化学発光試薬のシグナルは強くなっていきます。 |
ビオチン標識RNAプローブ
| Figure 1A: Competitor B's DIG System |
Figure 1B: Pierce North2South |
Figure 1C: 32P |
| Exposure Time |
5 min.
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25 min.
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5 min.
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25 min.
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72 hrs.
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一連の希釈した酵母RNAのノーザンブロット(5μg、2.5μg、0.625μg、0.313μg、0.156μg)は、発現させたTMC1遺伝子を測定したものです。(A)と(B)ではDIG標識したTMC1
cRNAプローブをハイブリダイズさせ、検出したものです。(C)と(D)はビオチン標識TMC1
cRNAをハイブリダイズさせ、サーモフィッシャーサイエンティフィック ピアスブランドのNorth2SouthTM化学発光検出システムで検出しました。(E)は32P標識のTMC1
cRNAプローブをハイブリダイズし検出した物です。各フィルムの露光時間は(A)=5分、(B)=25分、(C)=5分、(D)=25分、(E)=72時間です。いずれも増感紙は使用していません。
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| 多くのベクターにはクローン化DNAテンプレートからの転写RNA生成をさせるためのファージプロモーターを含んでいます。SP6,T7、T3ファージポリメラーゼなどはin vitroでの転写で一般的に広く使われています。RNA:RNA、RNA:DNAハイブリッドはDNA:DNAハイブリッドよりも安定なので、標識した転写RNAはハイブリダイゼーションにおいてはDNAを用いるよりも優れた感度を得ることができ、ます。また、転写RNAは一本鎖で、使用前に変性させる必要がないのでハイブリダイゼーションの収率をだ妥協せずにすみます。North2SouthTM
Biotin in vitro Transcription kitはサザンやノーザンブロット、ハイブリダイゼーションにおけるプローブの為の高い活性をもったRNAのビオチン標識ができます。反応後のハイブリッドはストレプトアビジン−HRP(Horseradish
peroxisase)で検出する事ができます。 |
ビオチン標識DNAプローブ
| North2SouthTM Random Prime DNA Labeling Kit は、FeinbergとVogelstein4,5らの技術に基づいた製品です。考えられる配列を全て含んだランダムヘプタヌクレオチドを熱処理して変性したD鋳型NAにアニールします。これらはDNAポリメラーゼ(Klenow
fragment, 3'-5' exo-)によって相補する鎖の合成する為のプライマーとなります。反応溶液中のビオチン標識したdNTPsは新しく合成されたDNAに取り込まれます。この方法でビオチン標識されたDNAはサザンやノーザンのハイブリダイゼーションを行う時にプローブとして高い活性を持たせることができます。反応後の、ハイブリッドはストレプトアビジン−HRPで検出する事ができます。 |

プラークの検出 |
遺伝子配列が既知のGFPに対するビオチン標識DNAプローブをNorth2SouthTM 化学発光検出システムを使って、出現したプラークにハイブリダイズしたもの。フィルムへの露光時間は1分間。
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References
1. Hrsch, J. and Henry, S.(1986). Expression
of the Saccharomyces cerevisiaeinositol-1-phosphatase
synthase (IN01) gene is regulated by factors
that affect phospholipid synthesis. Mol.
Cell. Biol. 6, 3320-3328.
2. Hoffman, C. and Winston, F. (1987). A
ten-minute DNA Preparation from yeast efficiently
releases autonomous plasmids for transformation
of Escherichia coli. Gene 57, 267-272.
3. Sakbrook, J.k., Fritsch, E. and Maniatis,
T. (eds.) Molecular Cloning, Second Edition
(1989). Cold Spring Harvor Press. Plainbviewm
New Yoak. (Product #17946)
4. Feinberg, A.P. and Vogelsteinm B. (1983).
Anal. Biochem. 132, 6.
5. Feinberg, A.P. and Vogelsteinm B. (1983).
Anal. Biochem. 137,266 |
| Cat. # |
製品名 |
容量 |
|
17097
|
North2South Chemiluminescent Hybridization
and Detection Kit
Sufficient reagents for ten 10 x 10 cm membranes.
| Hybridization Buffer |
125 ml |
| 2X Stringency Wash Buffer |
375 ml |
| Blocker Buffer |
500 ml |
| 4X Wash Buffer |
500 ml |
| Substrate Equilibration Buffer |
500 ml |
| Stabilized Streptavidin-HRP Conjugate |
1.5 ml |
| Luminol/Enhancer Solution |
80 ml |
| Stable Peroxide Solution |
80 ml |
|
Kit
|
     |
17095
代替
→17097 |
削除 05/5/18 North2South Chemiluminescent
Hybridization and Detection Kit |
Kit
|
 |
17075
|
North2South Biotin Random Prime DNA
Labeling Kit
Sufficient reagents for ten reactions**
| 5X Heptanucleotide Mix |
| 5X Deoxynucleotide Mix |
| 10X Reaction Buffer |
| Klenow DNA Polymerase |
| Control DNA |
| 5M Ammonium Acetate |
| 0.5M EDTA |
| Nuclease-free Water |
| 0.5 M EDTA |
|
Kit
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*Each reaction yields probe sufficient for
approximately thirty 10 x 10 cm blots.
**Each reaction yields probe
sufficient for
approximately three 10 x 10 cm
blots. |

| 製品情報は掲載時点のものですので、ご覧いただくタイミングにより製品情報が変更されている場合があります。 |
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